Instalaciones disponibles en la Facultad de Biología de la Universidad de Vigo:

• Laboratorio equipado en el modulo A de la 2ª planta de 50m².
• Laboratorio de cultivos celulares (estufa de incubación con CO² controlado, campana de flujo laminar, microscopio invertido).
• Laboratorio para estudio con animales de 20m² en la planta 0.
• Almacén de 20m² en la planta 0.

• Baño termostático (BUNSEN).
• Baño de ultrasonidos ULE1500 (AXTOR).
• Bomba peristáltica de 8 canales IPC (ISMATEC).
• Centrifugas:
• Angular centrifuge Cencom 2 (SELECTA)
• Centrifuga de sobremesa Harrier 18/80 (MSE)
• Centrifuga de sobremesa: 5810R (EPPENDORF)
• Centrifuga de sobremesa: 5415R (EPPENDORF)
• Centrifuga de sobremesa: 5415C (EPPENDORF)
• Crooslinker UVC 500 (HOEFER)
• Equipo de medición para antropometría:
  • Báscula 769 (SECA) con tallimetro 220 (SECA).
  • Body composition monitor BF511 (OMRON).
  • Body fat monitor BF306 (OMRON).
  • Medidor panículo:
    • Harperden HSB-BI (BATY INTERNATIONAL).
    • Holtain LTD. (CRYMYCH U.K).
  • Tallimetro 214 (SECA).
• Equipamiento de estudio de metabolismo y comportamiento:
  • 21 Jaulas metabólicas para rata (PANLAB).
  • 10 jaulas metabólicas para ratón (PANLAB).
  • 4 Jaulas metabólicas automáticas Physiocage 00 (PANLAB-Harvard Apparatus).
  • 4 Jaulas de actividad para rata (PANLAB-Harvard Apparatus).
  • 6 Jaulas de actividad para ratón (PANLAB-Harvard Apparatus).
  • Campo abierto para estudios de conducta en rata.
  • Laberinto en cruz para estudios de conducta en rata.
• Espectrofotómetro UV-VIS: DV530 (BECKMAN).
• Fuentes de Alimentación:
  • Power Pac HC (BIO-RAD).
  • GPS 200/400 (PHARMACIA LKB).
• Hibridization oven/shaker (Amersham Pharmacia Biotech).
• Inmovilizadores de roedores (Harvard apparatus).
• Mantas térmicas roedores (Panlab).
• Microscópio óptico modelo SE (NIKON).
• Sistema de análisis de imágenes de geles: Transiluminador MacroV (PHARMACIA) y cámara Super steadyshot DSC-H2 (SONY).
• Sistema de electroforesis geles de agarosa: Sub-Cell GT (BIO-RAD).
• Sistema de transferencia de geles Trans-blot Turbo (BIO-RAD).
• Sistema de Western Blot: mini-PROTEAN tetra cell (BIO-RAD).
• Termocicladores PCR convencional:
  • My CyclerTM termal cycler (BIO-RAD).
  • Master cycler gradient (EPPENDORF).

• Autoclave (SELECTA).
• Analizador de imágenes: ChemiDocTM XRS (Bio‐Rad).
• Destilador y equipo de agua osmotizada.
• Equipo de adquisición de imágenes ChemiDocTM XRS (Bio‐Rad).
• Equipamiento básico para immunoshistoquímica:
  • Micrótomo de congelación.
  • Vibrátomo VT1000S (LEICA).
  • Microscopios, etc).
• Espectrofotómetro para muestras de pequeño volumen NanoDrop® (THERMO SCIENTIFIC).

• In Vivo MX FX PRO (CARESTREAM).
• Laboratorio de cultivos celulares:
  • Estufa de incubación con CO² controlado Midi40 CO² incubator (Thermo Scientific).
  • Campana de flujo laminar clase II (NUAIRE).
  • Microscopio invertido TMS (NIKON).
• Lector de placas : EnVision® (PerkinElmer).
• Módulo Confocal Bio-Rad MCR-1024 | microscopio Nikon Eclipse E800.
• Módulo Confocal Leica SP5 | microscopio óptico invertido Leica DMI 6000.
• Sistema de PCR cuantitativa (qPCR) para cuantificar expresión génica.

• Cuantificación de metabolitos y actividades enzimáticas mediante espectrofotometría UV-VIS.
• Cuantificación por ELISA o RIA de niveles de hormonas en muestras biológicas.
• Cuantificación por qRT-PCR de los niveles de expresión de genes.
• Cuantificación por Western Blot de niveles.
• Cultivos celulares primarios.
• Desarrollo de modelos de estudio animal en roedores:
  • Modelo de diabetes.
  • Modelo de fibrosis pulmonar.
  • Modelo de hipoplasia pulmonar.
  • Modelo de subnutrición durante la gestación.
  • Modelo de estudio en animales vagotomizados.
  • Modelo de estudio en animales adrenalmente demedulados.

• Estudios de comportamiento emocional: depresión, ansiedad.
• Estudios de memoria a corto plazo.
• Estudios de metabolismo, control de la ingesta y en modelos de obesidad.
• Estudios de reproducción en roedores.
• Técnicas de cuidado y manipulación de roedores.
• Técnicas immunohistoquímicas en tejidos y células.
• Técnicas de administración de sustancias: intaperitoneal, intramuscular, intravenoso, intracerebroventricular, intragástrico, subcutáneo.
• Técnicas quirúrgicas en roedores: canulación intracerebroventricular, canulación yugular, ovariectomía, orquidectomía, adrenalectomía, vagotomía.
• Obtención de muestras sanguíneas: por punción yugular, cardiaca, mediante canulación muestras seriadas, punción vena caudal.
• Procesamiento de muestras tanto para experimentación in vivo como in vitro.